\u00ae<\/sup>. Le flacon ThinPrep est enfin ferm\u00e9, \u00e9tiquet\u00e9 et envoy\u00e9 \u00e0 un laboratoire \u00e9quip\u00e9 d’un processeur ThinPrep.<\/p>\nAu laboratoire, le flacon contenant l’\u00e9chantillon est compar\u00e9 au formulaire d’examen cytologique correspondant, puis un num\u00e9ro cytologique est attribu\u00e9 au formulaire, au flacon et \u00e0 une lame ThinPrep. Le flacon et la lame correspondante sont plac\u00e9s dans le processeur ThinPrep avec un cylindre de filtration gyn\u00e9cologique jetable (filtre clair), puis l’op\u00e9rateur s\u00e9lectionne la s\u00e9quence de lames appropri\u00e9e. Le processeur homog\u00e9n\u00e9ise l’\u00e9chantillon en faisant tourner le filtre (T2000) ou le flacon (T3000) afin de cr\u00e9er dans le liquide des forces de cisaillement suffisantes pour briser les gros amas de cellules, le sang, le mucus et les d\u00e9bris non diagnostiques tout en conservant intacts les groupes de cellules. Si elles sont correctement rinc\u00e9es, toutes les cellules recueillies vont dans la solution au lieu de rester sur l’instrument et d’\u00eatre jet\u00e9es apr\u00e8s un frottis conventionnel. Combin\u00e9e \u00e0 la randomisation de l’\u00e9chantillon de cellules pendant la phase de rotation, cette proc\u00e9dure permet le transfert d’un \u00e9chantillon cellulaire repr\u00e9sentatif sur la lame et une repr\u00e9sentation plus pr\u00e9cise de l’\u00e9tat de l’\u00e9pith\u00e9lium de la patiente.<\/p>\n
Les cellules sont ensuite recueillies sur la membrane du filtre TransCyt en appliquant un l\u00e9ger vide pour aspirer le liquide \u00e0 travers la membrane. Pendant le recueil du mat\u00e9riel du flacon sur la membrane du filtre, les pores de la membrane se bloquent et le processeur arr\u00eate l’aspiration. Le d\u00e9bit du filtre TransCyt est constamment surveill\u00e9 pour r\u00e9duire au minimum le risque de variations entre les \u00e9chantillons.<\/p>\n
Quand le processeur arr\u00eate l’\u00e9tape de filtration, le cylindre est retir\u00e9 du flacon et partiellement tourn\u00e9 pour \u00e9vacuer le filtrat dans la bouteille destin\u00e9e aux d\u00e9chets. Une rotation est ensuite appliqu\u00e9e au cylindre jusqu’\u00e0 la lame de verre, puis une l\u00e9g\u00e8re pression d’air est appliqu\u00e9e au filtre pour assurer le transfert des cellules entre le filtre et la lame. En raison des propri\u00e9t\u00e9s adh\u00e9sives des cellules et des propri\u00e9t\u00e9s \u00e9lectrochimiques des lames ThinPrep, les cellules pr\u00e9sentent une affinit\u00e9 sup\u00e9rieure avec la lame de verre qu’avec la membrane du filtre, et une fine couche de cellules est transf\u00e9r\u00e9e sur la lame dans un cercle de 20 mm de diam\u00e8tre. Une fois le transfert des cellules termin\u00e9, la lame est retir\u00e9e du contact du cylindre et automatiquement \u00e9ject\u00e9e dans un bain fixateur. Elle est ensuite retir\u00e9e par l’op\u00e9rateur et plac\u00e9e dans un portoir de lames (T2000) pour coloration de Papanicolaou et montage entre lame et lamelle. Dans le processeur T3000, la lame est fix\u00e9e par l’instrument avec une solution fixatrice brumis\u00e9e et plac\u00e9e dans un portoir de lames pour coloration de Papanicolaou et montage entre lame et lamelle.<\/p>\n
R\u00c9F\u00c9RENCES :<\/strong><\/p>\n\n- Hutchinson ML, et al: Homogeneous sampling accounts for the increased diagnostic accuracy using the ThinPrep\u00ae<\/sup> Processor. Am J of Clin Pathol 1994; 101:215-219.<\/li>\n
- ThinPrep\u00ae<\/sup> 2000 System Package Insert, Hologic, Inc., 2001.<\/li>\n
- TP\u00ae<\/sup> 2000 Operator’s Manual, Rev G, Hologic, Inc., 2000.<\/li>\n
- TP\u00ae<\/sup> 3000 Operator’s Manual, Rev C, Hologic, Inc., 2000-2001.<\/li>\n<\/ol>\n
BASES SCIENTIFIQUES
\nDavid Zahniser, PhD <\/em><\/p>\nLe frottis cervico-vaginal faux n\u00e9gatif repr\u00e9sente un probl\u00e8me de qualit\u00e9 important pour les laboratoires. L’impossibilit\u00e9 de d\u00e9tecter des maladies cervicales est due \u00e0 des erreurs d’\u00e9chantillonnage ou de d\u00e9pistage. Les erreurs d’\u00e9chantillonnage repr\u00e9sentent la majorit\u00e9 (entre 60 et 80 %) des faux n\u00e9gatifs, le reste \u00e9tant d\u00fb \u00e0 des erreurs de d\u00e9pistage et d’interpr\u00e9tation. Par le pass\u00e9, les erreurs d’\u00e9chantillonnage \u00e9taient attribu\u00e9es au pr\u00e9l\u00e8vement effectu\u00e9 par le clinicien. La raison pressentie \u00e9tait la taille ou l’emplacement de la l\u00e9sion (trop petite ou en haut du canal endocervical). Il est devenu \u00e9vident que les erreurs d’\u00e9chantillonnage jouent un r\u00f4le important dans la restriction de la sensibilit\u00e9 du frottis cervico-vaginal. Les premiers travaux de d\u00e9veloppement du syst\u00e8me ThinPrep\u00ae<\/sup> 2000 ont permis de d\u00e9couvrir les pi\u00e8ges inh\u00e9rents \u00e0 la pr\u00e9paration des frottis conventionnels (par la suite d\u00e9finis comme des erreurs d’\u00e9chantillonnage). Des \u00e9tudes montrent \u00e0 pr\u00e9sent que les erreurs d’\u00e9chantillonnage n’ont pas n\u00e9cessairement une cause humaine, mais qu’elles sont plus sp\u00e9cifiquement associ\u00e9es aux limites de la technique manuelle de pr\u00e9l\u00e8vement.<\/p>\nLes origines de la technologie ThinPrep remontent \u00e0 une \u00e9poque o\u00f9 divers travaux de recherche visaient \u00e0 d\u00e9velopper un syst\u00e8me quantitatif permettant d’analyser les frottis cervico-vaginaux. Au cours des ann\u00e9es 1960, les ordinateurs ont permis la construction de syst\u00e8mes d’analyse. Depuis le d\u00e9part, les syst\u00e8mes d’imagerie assist\u00e9e par ordinateur \u00e9taient limit\u00e9s par le manque de coh\u00e9rence des pr\u00e9parations manuelles. \u00c0 l’\u00e9vidence, les frottis cervicaux traditionnels \u00e9taient trop complexes pour permettre leur analyse par un syst\u00e8me automatis\u00e9. De nombreuses recherches ont d\u00e9bouch\u00e9 sur le d\u00e9veloppement d’appareils destin\u00e9s \u00e0 des pr\u00e9parations lisibles par une machine. La premi\u00e8re g\u00e9n\u00e9ration de syst\u00e8mes de pr\u00e9paration automatis\u00e9s a \u00e9t\u00e9 con\u00e7ue pour obtenir une population cellulaire unique sans groupe appropri\u00e9 \u00e0 l’analyse par les ordinateurs primitifs. Divers moyens m\u00e9caniques ont \u00e9t\u00e9 test\u00e9s pour d\u00e9sagr\u00e9ger ces strates et groupes de cellules. Des raclages cervicaux recueillis dans une solution ont \u00e9t\u00e9 soumis \u00e0 une vigoureuse action m\u00e9canique. Les appareils de pr\u00e9paration les plus performants utilisaient une seringue \u00e0 grande aiguille pour pomper l’\u00e9chantillon de cellules et obtenir une seule population de cellules. Ces appareils ont r\u00e9ussi \u00e0 pr\u00e9senter \u00e0 l’ordinateur des pr\u00e9parations cellulaires simplifi\u00e9es. Malheureusement, les pertes cellulaires et la destruction de l’architecture cellulaire accompagnant la mono-dispersion compromettaient l’interpr\u00e9tation humaine. Des travaux men\u00e9s aux Pays-Bas ont r\u00e9solu certains des probl\u00e8mes associ\u00e9s \u00e0 l’utilisation de la seringue. Ils ont int\u00e9gr\u00e9 \u00e0 l’\u00e9tape de dispersion un cylindre tournant \u00e0 vitesse \u00e9lev\u00e9e dans la suspension cellulaire. L’id\u00e9e \u00e9tait simple : la rotation du cylindre dans le flacon permettait d’obtenir des forces de cisaillement semblables \u00e0 l’action de la seringue. Le degr\u00e9 de dispersion pouvait \u00eatre manipul\u00e9 gr\u00e2ce au contr\u00f4le de la vitesse du cylindre de dispersion. Les processeurs ThinPrep actuels emploient la technique de dispersion par cylindre en appliquant une vitesse de dispersion nettement inf\u00e9rieure pour pr\u00e9server l’int\u00e9grit\u00e9 des liaisons cellulaires naturelles. En outre, des modifications ont \u00e9t\u00e9 apport\u00e9es \u00e0 la solution de recueil pour optimiser encore davantage la pr\u00e9paration des \u00e9chantillons.<\/p>\n
Parall\u00e8lement \u00e0 l’\u00e9tape de dispersion, une m\u00e9thode de filtration \u00e9tait \u00e9galement en cours de d\u00e9veloppement. La qualit\u00e9 des \u00e9chantillons pouvait encore \u00eatre am\u00e9lior\u00e9e en limitant les \u00e9l\u00e9ments non diagnostiques de fond. Il fallait faire attention \u00e0 ne perdre aucune information essentielle pr\u00e9sente dans le pr\u00e9l\u00e8vement d’origine. Une membrane de filtration en plastique a \u00e9t\u00e9 choisie pour concentrer le mat\u00e9riel cellulaire provenant de la suspension liquide et limiter ces artefacts par filtration simple. Le processus utilis\u00e9 pour produire ces filtres a donn\u00e9 lieu \u00e0 une distribution al\u00e9atoire de pores de taille uniforme.<\/p>\n
L’appareil de pr\u00e9paration exigeait une \u00e9tape suppl\u00e9mentaire pour d\u00e9poser les cellules en suspension sur une lame de verre. De nombreuses techniques ont \u00e9t\u00e9 \u00e9tudi\u00e9es pour optimiser cette \u00e9tape afin que l’\u00e9chantillon puisse faire l’objet d’une analyse humaine et informatique. L’utilisation de la membrane de filtration a permis le transfert des cellules sur la lame en appuyant le filtre et les cellules contre la lame pour obtenir une mince couche uniforme de cellules r\u00e9parties de fa\u00e7on homog\u00e8ne et pr\u00e9sentant une morphologie cellulaire famili\u00e8re.<\/p>\n
La p\u00e9nurie de cytotechnologistes et le nombre croissant de litiges ont expliqu\u00e9 le regain d’int\u00e9r\u00eat pour l’automatisation des frottis cervico-vaginaux. Le march\u00e9 compte de nombreux instruments de d\u00e9pistage informatique. Pourtant, malgr\u00e9 les avanc\u00e9es r\u00e9alis\u00e9es par la technologie, il manque toujours une m\u00e9thode coh\u00e9rente de pr\u00e9paration des lames. La technologie ThinPrep a permis d’aborder les limites associ\u00e9es \u00e0 la pr\u00e9paration des lames, tandis que les \u00e9tudes cliniques et non cliniques r\u00e9alis\u00e9es sur cette technologie ont am\u00e9lior\u00e9 la compr\u00e9hension des limites des frottis.<\/p>\n
R\u00c9F\u00c9RENCES :<\/strong><\/p>\n\n- Linder J and Zahniser: ThinPrep Papanicolaou testing to reduce false-negative cervical<\/li>\n<\/ol>\n
\u00c9VALUATION MICROSCOPIQUE DES LAMES THINPREP\u00ae<\/sup><\/p>\nDeanna K. Iverson, MHS, SCT(ASCP), HTL <\/em><\/p>\nGeorge Papanicolaou a developp\u00e9 les crit\u00e8res morphologiques des frottis cervico-vaginaux conventionnels au d\u00e9but des ann\u00e9es 1920. Graduellement, des modifications document\u00e9es ont \u00e9t\u00e9 apport\u00e9es sur la base de nombreuses \u00e9tudes. On note peu de changements dans les crit\u00e8res morphologiques de base entre la m\u00e9thode traditionnelle et le frottis ThinPrep. Les seules diff\u00e9rences microscopiques sont g\u00e9n\u00e9ralement associ\u00e9es \u00e0 la m\u00e9thode de recueil en milieu liquide utilis\u00e9e par le syst\u00e8me ThinPrep\u00ae<\/sup>. Il est important de noter que l’architecture tissulaire n’est pas alt\u00e9r\u00e9e pendant le traitement par l’instrument et que la morphologie cellulaire classique est utilis\u00e9e pour l’interpr\u00e9tation. Les similitudes morphologiques de la m\u00e9thode ThinPrep et des frottis conventionnels l’emportent largement sur les diff\u00e9rences. La morphologie conventionnelle est en outre facilement transposable. Voici un r\u00e9sum\u00e9 des principales caract\u00e9ristiques morphologiques des frottis ThinPrep et des m\u00e9thodes permettant de mieux d\u00e9tecter les anomalies. Cliquez pour agrandir l\u00b4image.<\/p>\nA l’instar des frottis conventionnels, l’examen des lames ThinPrep doit \u00eatre r\u00e9alis\u00e9 selon un mod\u00e8le lent syst\u00e9matique et en superposant les champs microscopiques. Sur la lame ThinPrep, le contour circulaire du d\u00e9p\u00f4t de cellules peut servir de point de r\u00e9f\u00e9rence. Avant l’\u00e9valuation syst\u00e9matique de la lame \u00e0 faible grossissement (10x), il peut s’av\u00e9rer int\u00e9ressant d’effectuer un examen rapide de la lame avec l’objectif de balayage (4x) pour \u00e9valuer la composition cellulaire, identifier le composant endocervical et \u00e9valuer la qualit\u00e9 technique de la pr\u00e9paration.<\/p>\n
Les cytotechnologistes et pathologistes exp\u00e9riment\u00e9s peuvent facilement identifier les diff\u00e9rents types de cellules sur les lames ThinPrep. Le cytologiste rencontrera toujours des cas biologiquement complexes qui n\u00e9cessitent un examen attentif. Des \u00e9valuations quantitatives de la cellularit\u00e9 (populations normales et anormales) similaires aux m\u00e9thodes conventionnelles peuvent toujours \u00eatre effectu\u00e9es. En revanche, avec les lames ThinPrep, la quantit\u00e9 de cellules anormales est moins importante que leur pr\u00e9sence ou absence d\u00e9finitive.<\/p>\n
Les caract\u00e9ristiques uniques des lames ThinPrep incluent l’uniformit\u00e9 des pr\u00e9parations cellulaires, la fixation liquide, la taille des cellules, la morphologie du frottis et le fond de l’\u00e9chantillon.<\/p>\n
Uniformit\u00e9 des pr\u00e9parations cellulaires :<\/em><\/p>\n\n- Concentration<\/li>\n
- R\u00e9partition homog\u00e8ne<\/li>\n
- Zone circulaire de 20 mm<\/li>\n<\/ul>\n
Comme le mat\u00e9riel cellulaire a \u00e9t\u00e9 recueilli dans une solution puis filtr\u00e9, la pr\u00e9sentation de l’\u00e9chantillon sur les lames ThinPrep diff\u00e8re quelque peu de celle des frottis conventionnels. En effet, ces derniers pr\u00e9sentent des zones \u00e9paisses et fines, des artefacts de s\u00e9chage \u00e0 l’air et souvent une d\u00e9formation m\u00e9canique du mat\u00e9riel cellulaire. Sur les lames ThinPrep, le mat\u00e9riel cellulaire est concentr\u00e9 et r\u00e9parti de fa\u00e7on homog\u00e8ne dans une zone circulaire de 20 mm. Les strates de l’\u00e9pith\u00e9lium sont visibles, mais les cellules sont moins superpos\u00e9es.<\/p>\n
Fixation liquide : <\/em><\/p>\n\n- Cellules regroup\u00e9es dans la solution<\/li>\n
- D\u00e9tail cytoplasmique am\u00e9lior\u00e9<\/li>\n
- Solution de recueil \u00e0 base de m\u00e9thanol<\/li>\n
- D\u00e9tail nucl\u00e9aire am\u00e9lior\u00e9<\/li>\n
- Chromasie variable<\/li>\n<\/ul>\n
Fixation liquide : Une caract\u00e9ristique unique des lames ThinPrep r\u00e9side dans le fait que le mat\u00e9riel cellulaire est recueilli et plac\u00e9 dans une solution de fixation en milieu liquide. La morphologie cellulaire de ces lames est similaire aux \u00e9chantillons non gyn\u00e9cologiques car les cellules ont tendance \u00e0 se regrouper dans la solution. En revanche, les divers types de cellules sont faciles \u00e0 distinguer sur les lames ThinPrep. Les cellules endocervicales peuvent appara\u00eetre en 3D et \u00eatre confondues avec des cellules endom\u00e9triales. \u00c0 fort grossissement, la configuration en palissade des cellules endocervicales peut souvent \u00eatre observ\u00e9e \u00e0 la p\u00e9riph\u00e9rie des groupes de cellules.<\/p>\n
La solution de fixation en milieu liquide pour frottis ThinPrep contient du m\u00e9thanol, alcool qui am\u00e9liore la conservation des cellules et la morphologie cellulaire. L’am\u00e9lioration des d\u00e9tails cytoplasmiques permet de mieux d\u00e9terminer l’origine des cellules et l’\u00e9tape de maturation. La morphologie nucl\u00e9aire am\u00e9lior\u00e9e r\u00e9sulte principalement de la fixation liquide. Il faut veiller \u00e0 ne pas sur-interpr\u00e9ter les noyaux bien pr\u00e9serv\u00e9s lors de l’\u00e9valuation des lames ThinPrep. L’am\u00e9lioration nucl\u00e9aire observ\u00e9e sur les lames ThinPrep est similaire \u00e0 celle observ\u00e9e sur des frottis conventionnels qui ont \u00e9t\u00e9 fix\u00e9s dans un liquide compos\u00e9 d’\u00e9thanol \u00e0 95 %.<\/p>\n
L’hyperchromasie nucl\u00e9aire g\u00e9n\u00e9ralement associ\u00e9e aux l\u00e9sions malpighiennes pouvant \u00eatre r\u00e9duite sur les lames ThinPrep, il peut ne pas s’agir d’un indicateur fiable. La pr\u00e9sence d’hyperchromasie doit \u00eatre prise en compte, mais son absence ne doit pas servir \u00e0 \u00e9carter la possibilit\u00e9 d’anomalies nucl\u00e9aires. En l’absence d’hyperchromasie, l’interpr\u00e9tation pr\u00e9cise des l\u00e9sions de haut grade peut \u00eatre particuli\u00e8rement difficile sur les lames ThinPrep, car elle d\u00e9pend des variations de taille et forme nucl\u00e9aires, crit\u00e8res morphologiques souvent n\u00e9glig\u00e9s ou sous-estim\u00e9s dans les frottis conventionnels.<\/p>\n
Taille des cellules : <\/em><\/p>\n\n- Proportionnellement plus petites<\/li>\n
- Cellules isol\u00e9es plus \u00e9videntes<\/li>\n<\/ul>\n
Taille des cellules : En raison de la fixation liquide, les cellules peuvent para\u00eetre proportionnellement plus petites dans les pr\u00e9parations ThinPrep. Une cellule interm\u00e9diaire bien conserv\u00e9e constitue une r\u00e9f\u00e9rence utile pour d\u00e9terminer la taille des cellules et des noyaux, en particulier lors de l’\u00e9valuation de petites cellules immatures de type m\u00e9taplasique. L’examen de ces cellules \u00e0 fort grossissement est essentiel \u00e0 l’\u00e9valuation pr\u00e9cise du noyau en vue de d\u00e9tecter une atypie nucl\u00e9aire, plus particuli\u00e8rement en l’absence d’hyperchromasie.<\/p>\n
Les cellules isol\u00e9es sont dispers\u00e9es et font partie d’un “sous-\u00e9chantillon randomis\u00e9”, caract\u00e9ristique du syst\u00e8me ThinPrep. Comme le sang et l’inflammation ne recouvrent pas ces cellules, le nombre de cellules isol\u00e9es est plus important dans la pr\u00e9paration que sur un frottis conventionnel.<\/p>\n
Morphologie du frottis : <\/em><\/p>\n\n- Aspect “frottis” \u00e9limin\u00e9<\/li>\n
- Fond alt\u00e9r\u00e9<\/li>\n<\/ul>\n
Morphologie du frottis : En g\u00e9n\u00e9ral, l’architecture cellulaire et le fond contextuel des lames ThinPrep sont similaires \u00e0 ceux observ\u00e9s sur des frottis conventionnels bien conserv\u00e9s. Sur les lames ThinPrep, le mat\u00e9riel cellulaire est uniforme et r\u00e9parti de fa\u00e7on homog\u00e8ne. L’architecture tissulaire est conserv\u00e9e (strates et syncytium) et la d\u00e9formation m\u00e9canique r\u00e9duite de fa\u00e7on significative.<\/p>\n
Fond : Contrairement aux frottis conventionnels, le fond des lames ThinPrep est g\u00e9n\u00e9ralement propre. Il est donc plus facile d’identifier les populations cellulaires normales et anormales. On note la pr\u00e9sence de sang, de mucus, d’inflammation et de diath\u00e8se sur les lames ThinPrep. N\u00e9anmoins, en raison de la diff\u00e9rence de m\u00e9thode de recueil et de pr\u00e9paration, ces entit\u00e9s ont un aspect l\u00e9g\u00e8rement diff\u00e9rent de celui des frottis conventionnels. Cette pr\u00e9sence masque rarement les cellules sur les lames ThinPrep, sauf s’il s’agit du principal produit pr\u00e9lev\u00e9 sur la patiente. Le sang frais est lys\u00e9 par l’agent h\u00e9molytique dans le liquide, rendant ainsi les h\u00e9maties moins color\u00e9es (cellules “fant\u00f4mes”). En raison de sa lyse incompl\u00e8te, le sang vieilli pr\u00e9sente une coloration rouge variable. La possibilit\u00e9 de diff\u00e9rencier le sang frais du sang vieilli peut s’av\u00e9rer utile pour d\u00e9tecter un processus malin.<\/p>\n
R\u00e9parti de fa\u00e7on plus homog\u00e8ne sur les lames ThinPrep, le mat\u00e9riel inflammatoire est souvent accroch\u00e9 aux cellules \u00e9pith\u00e9liales. Le fond peut occasionnellement prendre un aspect “n\u00e9glig\u00e9”. Le mat\u00e9riel pr\u00e9sent sur la lame semble sale et en lambeaux ; il contient en outre peu de cellules \u00e9pith\u00e9liales malpighiennes bien conserv\u00e9es. Avec ce type de fond, il est important de prendre en compte les \u00e9l\u00e9ments suivants : la pr\u00e9sence d’un agent infectieux, de cytolyse et\/ou de pathologie maligne (diath\u00e8se tumorale). Sur les lames ThinPrep, la diath\u00e8se tumorale (cellules inflammatoires, h\u00e9maties, fibrine, d\u00e9bris cellulaires n\u00e9crotiques et mat\u00e9riel prot\u00e9inac\u00e9 granulaire) peut \u00eatre observ\u00e9e dans le fond de la pr\u00e9paration, autour des ou sur les cellules \u00e9pith\u00e9liales (diath\u00e8se “accroch\u00e9e”).<\/p>\n
Retour au d\u00e9but<\/a>[\/vc_column_text][\/vc_column][vc_column width=”1\/3″ offset=”vc_hidden-sm vc_hidden-xs”][vc_widget_sidebar sidebar_id=”consulting-right-sidebar”][\/vc_column][\/vc_row]<\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"[vc_row 0=””][vc_column 0=”” offset=”vc_hidden-lg vc_hidden-md”][vc_raw_html 0=””]PGNlbnRlcj48YSBjbGFzcz0ic2hpZnRuYXYtdG9nZ2xlIHNoaWZ0bmF2LXRvZ2dsZS1idXR0b24iIGRhdGEtc2hpZnRuYXYtdGFyZ2V0PSJzaGlmdG5hdi1tYWluIj48aSBjbGFzcz0iZmEgZmEtYmFycyI+PC9pPiBUYWJsZSBvZiBDb250ZW50cyA8L2E+PC9jZW50ZXI+[\/vc_raw_html][\/vc_column][\/vc_row][vc_row][vc_column][vc_custom_heading text=”Atlas Gyn Section Une” font_container=”tag:h1|text_align:center” use_theme_fonts=”yes”][\/vc_column][\/vc_row][vc_row el_id=”acknowledgements”][vc_column width=”2\/3″][vc_column_text] REMERCIEMENTS Suzanne M. Werneke, BA, CT(ASCP) Je souhaite remercier Kurt Douglass, CT(ASCP), dont la version originale du ThinPrep Morphology Reference Manual (toujours utilis\u00e9) a permis \u00e0 ce projet de voir le jour. Un grand merci \u00e9galement \u00e0 Mike LeDonne, CT(ASCP) pour<\/p>\n","protected":false},"author":7,"featured_media":0,"parent":1888,"menu_order":0,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","template":"","meta":{"ngg_post_thumbnail":0,"footnotes":""},"class_list":["post-1916","page","type-page","status-publish","hentry"],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/1916","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/users\/7"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=1916"}],"version-history":[{"count":0,"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/1916\/revisions"}],"up":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/1888"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/cytologystuff.com\/fr\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=1916"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}
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